Team:KIT-Kyoto/Notebook/LabNote/GFPMLF9J

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:・昨日ライゲーションしてできたコロニーのプレカルチャーをした。<BR>
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・MLFのPCRと制限酵素処理<BR>
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・pSB1C3のプレカルチャー<BR>
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(方法)<BR>
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昨日のライゲーションで4つのコロニーができていたのでプレカルチャーを行うことにした<BR>
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それと同時進行で白血病の原因タンパクを作るとされているMLFをPCRで増やすことを行った
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:<tr><td width="150px" align=center>10 µM GFP Primer F</td><td width="100px"  align=right>1.5 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>10 µM GFP Primer R</td><td align=right>1.5 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>BBa_E0240</td><td align=right>1 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>10 x PCR Buffer for KOD Plus</td><td align=right>5 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>dNTPs</td><td align=right>4 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>MgSO<sub>4</sub></td><td align=right>4 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>ddH<sub>2</sub>O</td><td align=right>32 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>KOD Plus</td><td align=right>1 µl</td></tr>
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:<tr><td>&nbsp;</td><td align=right>total 50 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>Cycle条件</td></tr>
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:<tr><td width="100px" align=center>Pre-Denature</td><td width="100px" align=center>95°C</td><td width="100px" align=center>30sec</td><td width="100px">&nbsp;</td></tr>
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:<tr><td align=center>Denature</td><td align=center>95°C</td><td align=center>30sec</td><td align=center rowspan=3>30 Cycle</td></tr>
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そしてその後にPCR産物を制限酵素処理することにした<BR>
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制限酵素処理(MLF)<BR>
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下記の組成に従って反応液を調整した<BR>
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<tr><td>cDNA</td></tr>
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<tr><td width"150px" align=center>PCR産物 in ddH<sub>2</sub>O</td><td width"50px" align=right>44 µl</td></tr>
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<tr><td align=center>10 x H Buffer</td><td align=right>5 µl</td></tr>
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<tr><td align=center><I>Pst1,Ecoli1</I></td><td align=right>1 µl</td></tr>
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<tr><td>&nbsp;</td><td align=right>total 51 µl</td></tr>
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37°Cで20時間静置した
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<b>Results</b>
<b>Results</b>

Revision as of 04:26, 4 October 2011



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Home > Notebook > Lab Note > September Language:English/Japanese

9月1日

Member

中川


1.QIAquick Gel Extraction Kitを使用してゲルからpSB1C3のDNAを抽出し、濃度を測定した。
2.8/30に再設計したプライマーを用いて以下の条件でBBa_E0240のPCRを行った。


PCR条件
10 µM GFP Primer F1.5 µl
10 µM GFP Primer R1.5 µl
BBa_E02401 µl
10 x PCR Buffer for KOD Plus5 µl
dNTPs4 µl
MgSO44 µl
ddH2O32 µl
KOD Plus1 µl
 total 50 µl
Cycle条件
Pre-Denature95°C30sec 
Denature95°C30sec30 Cycle
Anneling50°C1min
Extension68°C1min
End4°Ckeep 




Results

1.泳動後の写真

約2kbのところにバンドが見られた。


抽出したゲルのうち5 µlを20倍希釈し、吸光計で濃度測定をしたところ、濃度は17.8ng/µlと算出された。


1回目0.019
2回目0.013
3回目0.019
4回目0.022
5回目0.016
ave.0.0178



2.9月2日に続く


9月2日

Member

中川


昨日のBBa_E0240のPCR産物のフェノールクロロホルム処理、PCR産物の増幅を確認するための電気泳動、PCR産物の制限酵素処理を行った。
制限酵素処理は、下記の表に従って反応液を調整し、37°Cでインキュベートした。(overnight)



Results

泳動後の写真


PCR産物の増幅が確認できた。


9月3日

Member

中川


QIAquick Gel Extraction Kitを使用して制限酵素処理済みのBBa_E0240をゲル抽出した。


Results


9月5日

Member

中川


下表に従ってpSB1C3(19 ng/µl)とBBa_E0240(noATG GFP、25 ng/µl)のライゲーションを行った。


BBa_E02400.5 µl
pSB1C30.5 µl
10 x Buffer2.5 µl
F4 ligase0.5 µl
ddH2O1.0 µl
 total 5 µl


16°C、30minでincubateした後、形質転換を行った。



Results

コロニーは全く生えていなかった。
インサートとベクターの量に注意して再度ライゲーションを行う。


9月6日

Member

吉村、中川


1.ベクターとインサートの濃度比を1:9にして昨日と同様にライゲーションを行った。
2.Flag-tag dMLFのプライマー設計


Results

1.翌日、4つのコロニーが確認できた。
2.F:AAAGAATTCAAATCTAGAAAAATGGACTACAAGGACGA

     :EcoRⅠ    Xba

Tm値:72.14℃ 38塩基
</span></p>

R:AAACTGCAGAAAACTAGTAAATACCCTACTTCTTCTTGCC

     :PstⅠ     Spe

Tm値:72.16℃ 40塩基


9月7日

Member

中川


・昨日ライゲーションしてできたコロニーのプレカルチャーをした。

・MLFのPCRと制限酵素処理
・pSB1C3のプレカルチャー
(方法)
昨日のライゲーションで4つのコロニーができていたのでプレカルチャーを行うことにした



それと同時進行で白血病の原因タンパクを作るとされているMLFをPCRで増やすことを行った

PCR条件
10 µM GFP Primer F1.5 µl
10 µM GFP Primer R1.5 µl
BBa_E02401 µl
10 x PCR Buffer for KOD Plus5 µl
dNTPs4 µl
MgSO44 µl
ddH2O32 µl
KOD Plus1 µl
 total 50 µl
Cycle条件
Pre-Denature95°C30sec 
Denature95°C30sec30 Cycle
Anneling50°C1min
Extension68°C1min
End4°Ckeep 


そしてその後にPCR産物を制限酵素処理することにした
制限酵素処理(MLF)

下記の組成に従って反応液を調整した

cDNA
PCR産物 in ddH2O44 µl
10 x H Buffer5 µl
Pst1,Ecoli11 µl
 total 51 µl


37°Cで20時間静置した



Results


9月8日

Member

中川



Results


9月9日

Member

中川



Results



9月12日

Member

吉村、中川



Results


9月13日

Member

吉村、中川



Results


9月14日

Member

吉村、中川


1.PCRでFlag-MLFが増幅しているかを調べるため電気泳動を行った。
2.pSB1C3のアルカリミニプレップ、フェノールクロロホルム処理、制限酵素処理



Results

泳動後の写真


ゲルの濃度を2倍にしたところ、マーカーが流れなかったので、Flag-tag MLFの電気泳動に関しては今後、2%のアガロースゲルで行うこととする。


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