Team:LMU-Munich/intern/Status
From 2011.igem.org
go to main page
Contents |
Aktueller Stand der Recherche
Uebersicht Chrom
Bitte vervollstaendigt die Tabelle.
Metall | Kontakt hergestellt | Plasmid verfuegbar | Plasmid Sequenz bekannt | Klonierungsstrategie | Primerdesign |
---|---|---|---|---|---|
CrO42- / Cr2O72- | Teilweise | prinzipiell, ja | nein | PCR moeglich | nein |
Details
Ich wuerde hier die restlichen Informationen einfuegen, und vor allem eventuelle Probleme detailiert beschreiben.
CrO42- / Cr2O72-
Beschreibung des Sensors
- 1998 wurde ein Plasmid (pEBZ141) entwickelt, welches eine Fusion ist von dem Chrom-Resistenz Gen chr und einer Luciferase ist.
- chr kodiert unter anderem fuer einen Chromtransporter.
- Der Sensor ist sehr selektiv (effektiv reagiert er nur auf Chromat und Dichromat) und scheint zuverlaessig zu arbeiten.
- Fuer eine hohe Effizienz wird ein bestimmter Stamm von CH34 benoetigt (AE104), welcher kein naturliches Plasmid besitzt.
Problembeschreibung
- Ich habe den Kontakt mit der Gruppe hergestellt. Prinzipiell koennen wir das Plasmid haben, wir brauchen jedoch die Zustimmung von Bayer. Anfrage wurde versendet (Mittwoch), bisher noch keine Antwort.
- Ein weiteres Problem koennte der CH34 Stamm sein. Angeblich wird eine Einstufung nach S2 diskutiert und der Prof. kann die entsprechenden Staemme deswegeb nicht verschicken. Wir haben ein S2 Labor zur Verfuegung. Noch keine Ruecksprache gehalten. Warte auf Bayer.
Literatur
- http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=pEBZ141
Sequenzen
- Die Sequenz des natuerlichen Plasmids (pMOL28) von welchem chr urspruenglich kloniert wurde.
- http://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/291434858?report=fasta
- chr liegt auf dem - Strang zwischen den Basenpaaren 49924 und 52146.
Klonierungsstrategie
Mittels PCR chrBA'::lux vom Plasmid klonieren und in Biobrick einfuegen. Ich habe nach der Sequenz von pEBZ141 noch nicht gefragt.
Primerdesign
Stop-Codon sei rot Überhang sei durch ein Leerzeichen getrennt
Primer | Sequenz | Tm | Schnittstellen | Besonderheiten | für Konstrukt |
---|---|---|---|---|---|
Name1f | AAA | 60°C | E,N,X | liegt auf Plasmid | NikR |
Name2r | AAA | 60°C | S,(N,P) | liegt auf Plasmid | NikR |
Name3f | AAA | 60°C | E,N,X | Mutagenierung | NikR |
Name4r | AAA | 60°C | S,(N,P) | Mutagenierung | NikR |
Sonstiges
Uebersicht Nickel NikR
Bitte vervollstaendigt die Tabelle.
Metall | Kontakt hergestellt | Plasmid verfuegbar | Plasmid Sequenz bekannt | Klonierungsstrategie | Primerdesign |
---|---|---|---|---|---|
Ni2+ | ja | versprochen, noch nicht angekommen | nein | PCR moeglich, evtl 2.Operator per Primer-Dimer einbauen | alle bis auf einen |
Details
Ich wuerde hier die restlichen Informationen einfuegen, und vor allem eventuelle Probleme detailiert beschreiben.
Beschreibung des Sensors
NikR ist ein Repressor für das Nik-Operon, welcher in Anwesenheit von Ni2+ selbiges und an den Promotor des Nik-Operons bindet und dadurch die Translation verhindert. Evtl. doppelt-negativ Schleife einbauen.
Problembeschreibung
Funktioniert nur anaerob, da FNR als Trankriptionsaktivator benötigt wird und FNR durch O2 inaktiviert wird. Evtl. anaerob kultivieren, eintrocknen und dann aerob verwendbar? Für quantitavie Analyse: Öl überschichten oder Folie drauf. Hohes Expressionsniveau ohne Nickel, aber nicht hundertprozentig dicht mit Nickel --> evtl 2. Operator. Plasmid wurde versprochen, aber noch nicht geschickt. Ansonsten PCR von gDNA E.coli K12 möglich.
Literatur
• Complex Transcriptional Control Links NikABCDE-Dependent Nickel Transport with Hydrogenase Expression in Escherichia coli (Rowe, Starnes, Chivers, 2005) "Link"
• Coordinating intracellular nickel-metal-site structure-function relationships and the NikR and RcnR repressors (Iwig, Chivers, 2010) "Abstract"habs leider bis jetzt nur ausgedruckt
• Nickel homeostasis in Escherichia coli – the rcnR-rcnA efflux pathway and its linkage to NikR function (Iwig, Lowe, Chivers, 2006) bald auf "Link"
• A microbial biosensor to predict bioavailable nickel in soil and its transfer to plants (Tibazarwa, Corbisier, Mench, Bossus, Solda, Mergeay, Wyns, van der Lelie, 2000) bald auf "Link"
• Regulation of High Affinity Nickel Uptake in Bacteria (Chivers, Sauer, 2000) http://team.rapidpages.com/
• http://genome-www.stanford.edu/vectordb/vector_descrip/COMPLETE/PACYC184.SEQ.html (Plasmid)
• http://genolist.pasteur.fr/Colibri/genome.cgi
Sequenzen
NikR operator site: TAATCAGTATGACGAATACTTAAAATCGTCATACTTATTT
Pnik:
NikR (nicht benötigt)
Klonierungsstrategie
Pnik mit den Primern Pnikf und Pnikr aus Plasmid/gDNA per PCR herausholen, mit E+S vor Reportergen klonieren.
Primerdesign
Stop-Codon sei rot Überhang sei durch ein Leerzeichen getrennt
Primer | Sequenz | Tm | Schnittstellen | Besonderheiten | für Konstrukt |
---|---|---|---|---|---|
Name1f | AAA | 60°C | E,N,X | liegt auf Plasmid | NikR |
Name2r | AAA | 60°C | S,(N,P) | liegt auf Plasmid | NikR |
Name3f | AAA | 60°C | E,N,X | Mutagenierung | NikR |
Name4r | AAA | 60°C | S,(N,P) | Mutagenierung | NikR |
Sonstiges
Uebersicht Eisen
Metall | Kontakt hergestellt | Plasmid verfuegbar | Plasmid Sequenz bekannt | Klonierungsstrategie | Primerdesign |
---|---|---|---|---|---|
Fe2+ (Mn2+) | Ja | eventuel (muss noch gesucht werden) | nein, kann aber zusammengesetzt werden | PCR moeglich | teilweise |
Details
Fe2+ (Mn2+)
Beschreibung des Sensors
- norB als Promotor. Wobei Fur als Aktivator bei Eisenbindung wirkt
- eventuel N. meningitidis Fur benötigt, auch bereits angefragt (muss noch gesucht werden)
- dabei ein Fur deletierten E.coli Stamm nötig, auch bereits angefragt (noch keine Antwort)
Problembeschreibung
- Wenn Plasmid nicht gefunden wird, müssen wir mit einem krankheitserregenden Bakterium arbeiten
Literatur
- http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15130126
Sequenzen
Klonierungsstrategie
Mit PCR norB herausholen und in Biobrick vector klonieren. Als auch mit Fur.
Primerdesign
kommt noch
Primer | Sequenz | Tm | Schnittstellen | Besonderheiten | für Konstrukt |
---|---|---|---|---|---|
Name1f | AAA | 60°C | E,N,X | liegt auf Plasmid | NikR |
Name2r | AAA | 60°C | S,(N,P) | liegt auf Plasmid | NikR |
Name3f | AAA | 60°C | E,N,X | Mutagenierung | NikR |
Name4r | AAA | 60°C | S,(N,P) | Mutagenierung | NikR |
Sonstiges
Uebersicht Chrom
Bitte vervollstaendigt die Tabelle.
Metall | Kontakt hergestellt | Plasmid verfuegbar | Plasmid Sequenz bekannt | Klonierungsstrategie | Primerdesign |
---|---|---|---|---|---|
CrO42- / Cr2O72- | Teilweise | prinzipiell, ja | nein | PCR moeglich | nein |
Details
Ich wuerde hier die restlichen Informationen einfuegen, und vor allem eventuelle Probleme detailiert beschreiben.
CrO42- / Cr2O72-
Beschreibung des Sensors
- 1998 wurde ein Plasmid (pEBZ141) entwickelt, welches eine Fusion ist von dem Chrom-Resistenz Gen chr und einer Luciferase ist.
- chr kodiert unter anderem fuer einen Chromtransporter.
- Der Sensor ist sehr selektiv (effektiv reagiert er nur auf Chromat und Dichromat) und scheint zuverlaessig zu arbeiten.
- Fuer eine hohe Effizienz wird ein bestimmter Stamm von CH34 benoetigt (AE104), welcher kein naturliches Plasmid besitzt.
Problembeschreibung
- Ich habe den Kontakt mit der Gruppe hergestellt. Prinzipiell koennen wir das Plasmid haben, wir brauchen jedoch die Zustimmung von Bayer. Anfrage wurde versendet (Mittwoch), bisher noch keine Antwort.
- Ein weiteres Problem koennte der CH34 Stamm sein. Angeblich wird eine Einstufung nach S2 diskutiert und der Prof. kann die entsprechenden Staemme deswegeb nicht verschicken. Wir haben ein S2 Labor zur Verfuegung. Noch keine Ruecksprache gehalten. Warte auf Bayer.
Literatur
- http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=pEBZ141
Sequenzen
- Die Sequenz des natuerlichen Plasmids (pMOL28) von welchem chr urspruenglich kloniert wurde.
- http://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/291434858?report=fasta
- chr liegt auf dem - Strang zwischen den Basenpaaren 49924 und 52146.
Klonierungsstrategie
Mittels PCR chrBA'::lux vom Plasmid klonieren und in Biobrick einfuegen. Ich habe nach der Sequenz von pEBZ141 noch nicht gefragt.
Primerdesign
Stop-Codon sei rot Überhang sei durch ein Leerzeichen getrennt
Primer | Sequenz | Tm | Schnittstellen | Besonderheiten | für Konstrukt |
---|---|---|---|---|---|
Name1f | AAA | 60°C | E,N,X | liegt auf Plasmid | NikR |
Name2r | AAA | 60°C | S,(N,P) | liegt auf Plasmid | NikR |
Name3f | AAA | 60°C | E,N,X | Mutagenierung | NikR |
Name4r | AAA | 60°C | S,(N,P) | Mutagenierung | NikR |
Sonstiges
Uebersicht Chrom
Bitte vervollstaendigt die Tabelle.
Metall | Kontakt hergestellt | Plasmid verfuegbar | Plasmid Sequenz bekannt | Klonierungsstrategie | Primerdesign |
---|---|---|---|---|---|
CrO42- / Cr2O72- | Teilweise | prinzipiell, ja | nein | PCR moeglich | nein |
Details
Ich wuerde hier die restlichen Informationen einfuegen, und vor allem eventuelle Probleme detailiert beschreiben.
CrO42- / Cr2O72-
Beschreibung des Sensors
- 1998 wurde ein Plasmid (pEBZ141) entwickelt, welches eine Fusion ist von dem Chrom-Resistenz Gen chr und einer Luciferase ist.
- chr kodiert unter anderem fuer einen Chromtransporter.
- Der Sensor ist sehr selektiv (effektiv reagiert er nur auf Chromat und Dichromat) und scheint zuverlaessig zu arbeiten.
- Fuer eine hohe Effizienz wird ein bestimmter Stamm von CH34 benoetigt (AE104), welcher kein naturliches Plasmid besitzt.
Problembeschreibung
- Ich habe den Kontakt mit der Gruppe hergestellt. Prinzipiell koennen wir das Plasmid haben, wir brauchen jedoch die Zustimmung von Bayer. Anfrage wurde versendet (Mittwoch), bisher noch keine Antwort.
- Ein weiteres Problem koennte der CH34 Stamm sein. Angeblich wird eine Einstufung nach S2 diskutiert und der Prof. kann die entsprechenden Staemme deswegeb nicht verschicken. Wir haben ein S2 Labor zur Verfuegung. Noch keine Ruecksprache gehalten. Warte auf Bayer.
Literatur
- http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=pEBZ141
Sequenzen
- Die Sequenz des natuerlichen Plasmids (pMOL28) von welchem chr urspruenglich kloniert wurde.
- http://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/291434858?report=fasta
- chr liegt auf dem - Strang zwischen den Basenpaaren 49924 und 52146.
Klonierungsstrategie
Mittels PCR chrBA'::lux vom Plasmid klonieren und in Biobrick einfuegen. Ich habe nach der Sequenz von pEBZ141 noch nicht gefragt.
Primerdesign
Stop-Codon sei rot Überhang sei durch ein Leerzeichen getrennt
Primer | Sequenz | Tm | Schnittstellen | Besonderheiten | für Konstrukt |
---|---|---|---|---|---|
Name1f | AAA | 60°C | E,N,X | liegt auf Plasmid | NikR |
Name2r | AAA | 60°C | S,(N,P) | liegt auf Plasmid | NikR |
Name3f | AAA | 60°C | E,N,X | Mutagenierung | NikR |
Name4r | AAA | 60°C | S,(N,P) | Mutagenierung | NikR |
Sonstiges
Uebersicht Chrom
Bitte vervollstaendigt die Tabelle.
Metall | Kontakt hergestellt | Plasmid verfuegbar | Plasmid Sequenz bekannt | Klonierungsstrategie | Primerdesign |
---|---|---|---|---|---|
CrO42- / Cr2O72- | Teilweise | prinzipiell, ja | nein | PCR moeglich | nein |
Details
Ich wuerde hier die restlichen Informationen einfuegen, und vor allem eventuelle Probleme detailiert beschreiben.
CrO42- / Cr2O72-
Beschreibung des Sensors
- 1998 wurde ein Plasmid (pEBZ141) entwickelt, welches eine Fusion ist von dem Chrom-Resistenz Gen chr und einer Luciferase ist.
- chr kodiert unter anderem fuer einen Chromtransporter.
- Der Sensor ist sehr selektiv (effektiv reagiert er nur auf Chromat und Dichromat) und scheint zuverlaessig zu arbeiten.
- Fuer eine hohe Effizienz wird ein bestimmter Stamm von CH34 benoetigt (AE104), welcher kein naturliches Plasmid besitzt.
Problembeschreibung
- Ich habe den Kontakt mit der Gruppe hergestellt. Prinzipiell koennen wir das Plasmid haben, wir brauchen jedoch die Zustimmung von Bayer. Anfrage wurde versendet (Mittwoch), bisher noch keine Antwort.
- Ein weiteres Problem koennte der CH34 Stamm sein. Angeblich wird eine Einstufung nach S2 diskutiert und der Prof. kann die entsprechenden Staemme deswegeb nicht verschicken. Wir haben ein S2 Labor zur Verfuegung. Noch keine Ruecksprache gehalten. Warte auf Bayer.
Literatur
- http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=pEBZ141
Sequenzen
- Die Sequenz des natuerlichen Plasmids (pMOL28) von welchem chr urspruenglich kloniert wurde.
- http://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/291434858?report=fasta
- chr liegt auf dem - Strang zwischen den Basenpaaren 49924 und 52146.
Klonierungsstrategie
Mittels PCR chrBA'::lux vom Plasmid klonieren und in Biobrick einfuegen. Ich habe nach der Sequenz von pEBZ141 noch nicht gefragt.
Primerdesign
Stop-Codon sei rot Überhang sei durch ein Leerzeichen getrennt
Primer | Sequenz | Tm | Schnittstellen | Besonderheiten | für Konstrukt |
---|---|---|---|---|---|
Name1f | AAA | 60°C | E,N,X | liegt auf Plasmid | NikR |
Name2r | AAA | 60°C | S,(N,P) | liegt auf Plasmid | NikR |
Name3f | AAA | 60°C | E,N,X | Mutagenierung | NikR |
Name4r | AAA | 60°C | S,(N,P) | Mutagenierung | NikR |
Sonstiges
Uebersicht Chrom
Bitte vervollstaendigt die Tabelle.
Metall | Kontakt hergestellt | Plasmid verfuegbar | Plasmid Sequenz bekannt | Klonierungsstrategie | Primerdesign |
---|---|---|---|---|---|
CrO42- / Cr2O72- | Teilweise | prinzipiell, ja | nein | PCR moeglich | nein |
Details
Ich wuerde hier die restlichen Informationen einfuegen, und vor allem eventuelle Probleme detailiert beschreiben.
CrO42- / Cr2O72-
Beschreibung des Sensors
- 1998 wurde ein Plasmid (pEBZ141) entwickelt, welches eine Fusion ist von dem Chrom-Resistenz Gen chr und einer Luciferase ist.
- chr kodiert unter anderem fuer einen Chromtransporter.
- Der Sensor ist sehr selektiv (effektiv reagiert er nur auf Chromat und Dichromat) und scheint zuverlaessig zu arbeiten.
- Fuer eine hohe Effizienz wird ein bestimmter Stamm von CH34 benoetigt (AE104), welcher kein naturliches Plasmid besitzt.
Problembeschreibung
- Ich habe den Kontakt mit der Gruppe hergestellt. Prinzipiell koennen wir das Plasmid haben, wir brauchen jedoch die Zustimmung von Bayer. Anfrage wurde versendet (Mittwoch), bisher noch keine Antwort.
- Ein weiteres Problem koennte der CH34 Stamm sein. Angeblich wird eine Einstufung nach S2 diskutiert und der Prof. kann die entsprechenden Staemme deswegeb nicht verschicken. Wir haben ein S2 Labor zur Verfuegung. Noch keine Ruecksprache gehalten. Warte auf Bayer.
Literatur
- http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=pEBZ141
Sequenzen
- Die Sequenz des natuerlichen Plasmids (pMOL28) von welchem chr urspruenglich kloniert wurde.
- http://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/291434858?report=fasta
- chr liegt auf dem - Strang zwischen den Basenpaaren 49924 und 52146.
Klonierungsstrategie
Mittels PCR chrBA'::lux vom Plasmid klonieren und in Biobrick einfuegen. Ich habe nach der Sequenz von pEBZ141 noch nicht gefragt.
Primerdesign
Stop-Codon sei rot Überhang sei durch ein Leerzeichen getrennt
Primer | Sequenz | Tm | Schnittstellen | Besonderheiten | für Konstrukt |
---|---|---|---|---|---|
Name1f | AAA | 60°C | E,N,X | liegt auf Plasmid | NikR |
Name2r | AAA | 60°C | S,(N,P) | liegt auf Plasmid | NikR |
Name3f | AAA | 60°C | E,N,X | Mutagenierung | NikR |
Name4r | AAA | 60°C | S,(N,P) | Mutagenierung | NikR |