Team:KIT-Kyoto/Notebook/LabNoteJ/DIAP2-MALTJ8

Home > Notebook > Lab Note > August	Language：English/Japanese

８月８日

Member

松浪、横井川

API2-MALT1、DIAP2について以下のプライマーを用いて、以下の条件でPCRを行った。

API2-MALT1

F primer:GCCGCTCGAGAACATAGTAGAAAACAGCAT

Tm値　57.8°C

R　primer:GCCGGCTAGCTCATTTTTCAGAAATTCTGA

Tm値　56.5°C

増幅サイズ　　約3131 bp

DIAP2

F primer:GCTTCTCGAGACGGAGCTGGGCATGGAGCT

Tm値　69°C

R primer:GCCGTCTAGATCACGAAAGGAACGTGCGCA

Tm値　66.4°C

増幅サイズ　　約1514 bp

1.API2-MALT1

PCR条件 10 µM Primer F 0.4 µl 10 µM Primer R 0.4 µl Template DNA 1 µl 10 x Ex Taq Buffer 2 µl Takara Ex Taq 0.1 µl 2.0 mM dNTPs 2 µl ddH2O 14.1 µl   total 20 µl

Cycle条件 Pre-Denature 94°C 2min   Denature 94°C 30sec 37 Cycle Anneling 51.5°C 30sec Extension 72°C 3min20sec +Extension 72°C 10min   End 4°C keep

2.DIAP2

PCR条件 10 µM Primer F 0.4 µl 10 µM Primer R 0.4 µl Template DNA 1 µl 10 x Ex Taq Buffer 2 µl Takara Ex Taq 0.1 µl 2.0 mM dNTPs 2 µl ddH2O 14.1 µl   total 20 µl

Cycle条件 Pre-Denature 94°C 2min   Denature 94°C 30sec 37 Cycle Anneling 56.9°C 30sec Extension 72°C 1min40sec +Extension 72°C 10min   End 4°C keep

８月９日

Member

松浪、横井川

1.PCR産物が増幅していることを確認するため、100 V 30minでアガロース電気泳動を行った。

2.pUAST溶液のトランスフォーメーションを行った。

Results

1.泳動後の写真

1レーン；マーカー（1 Kbp）、2レーン；API2-MALT1、3レーン；DIAP2

2つとも予想される位置にバンドが確認されなかった。

2.コロニーの生育がみられた。

８月１０日

Member

松浪

1.API2-MALT1、DIAP2について、以下の条件でPCRを行った。

2.pUASTのプレカルチャー

1.API2-MALT1

PCR条件 10 µM Primer F 0.4 µl 10 µM Primer R 0.4 µl Template DNA 1 µl 10 x Ex Taq Buffer 2 µl Takara Ex Taq 0.1 µl 2.0 mM dNTPs 2 µl ddH2O 14.1 µl   total 20 µl

Cycle条件 Pre-Denature 94°C 2min   Denature 94°C 30sec 37 Cycle Anneling 51.5°C 30sec Extension 72°C 3min20sec +Extension 72°C 10min   End 4°C keep

DIAP2

PCR条件 10 µM Primer F 0.4 µl 10 µM Primer R 0.4 µl Template DNA 1 µl 10 x Ex Taq Buffer 2 µl Takara Ex Taq 0.1 µl 2.0 mM dNTPs 2 µl ddH2O 14.1 µl   total 20 µl

Cycle条件 Pre-Denature 94°C 2min   Denature 94°C 30sec 37 Cycle Anneling 56.9°C 30sec Extension 72°C 1min40sec +Extension 72°C 10min   End 4°C keep

2.全てのサンプルに大腸菌の増殖がみられた。

８月１１日

Member

松浪

pUAST flag vectorのアルカリミニプレップをした後、プラスミドの確認をするため、アガロース電気泳動を行った。

Results

泳動後の写真

左から順に1レーン；マーカー（1 Kbp）、2～9レーン；pUAST、10レーン；flag、11レーン；API2-MALT1、12レーン；DIAP2

pUASTは予想される位置にバンドが確認されたが、API2-MALT1、DIAP2は確認されなかった。

８月１２日

Member

松浪、横井川

1.pUAST flag vectorのアルカリミディプレップをした後、DNA濃度測定を行った。

2.プラスミドの確認をするため、アガロース電気泳動を行った。

Results

1.サンプル1、2の吸光度を測定した結果を以下に示す（表1）。

表1、サンプル1、2の吸光度の値

サンプル1

0.189

0.208

0.192

0.190

0.191

平均は0.194であった。

これより、サンプル1のDNA濃度は0.970 µg/µlであった。

サンプル2

0.282

0.276

0.278

0.269

0.269

平均は0.275でった。

これより、サンプル2のDNA濃度は1.37 µg/µlであった。

2.:泳動後の写真

左がマーカー(1kb)、右から順にサンプル1、サンプル2、flagである。

予想される位置にバンドが見られた。

８月１５日

Member

松浪、横井川

API2-MALT1、DIAP2について、以下の条件でPCRを行った。

API2-MALT1

PCR条件 10 µM Primer F 0.4 µl 10 µM Primer R 0.4 µl Template DNA 1 µl 10 x Ex Taq Buffer 2 µl Takara Ex Taq 0.1 µl 2.0 mM dNTPs 2 µl ddH2O 14.1 µl   total 20 µl

Cycle条件 Pre-Denature 94°C 2min   Denature 94°C 30sec 37 Cycle Anneling 58.9°C 30sec Extension 72°C 3min20sec +Extension 72°C 10min   End 4°C keep

DIAP2

PCR条件 10 µM Primer F 0.4 µl 10 µM Primer R 0.4 µl Template DNA 1 µl 10 x Ex Taq Buffer 2 µl Takara Ex Taq 0.1 µl 2.0 mM dNTPs 2 µl ddH2O 14.1 µl   total 20 µl

Cycle条件 Pre-Denature 94°C 2min   Denature 94°C 30sec 37 Cycle Anneling 53°C 30sec Extension 72°C 1min40sec +Extension 72°C 10min   End 4°C keep

PCR産物が増幅していることを確認するため、アガロース電気泳動を行った。

Results

泳動後の写真

左から順に1レーン；マーカー（1 Kbp）、2レーン；API2-MALT1、3レーン；DIAP2

API2-MALT1は予想される位置にバンドが確認されず、DIAP2は複数本のバンドが見られた。

８月１６日

Member

松浪