Team:KIT-Kyoto/Notebook/LabNoteJ/DIAP2-MALTJ9

From 2011.igem.org

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:DIAP2について以下のプライマーを用いて、以下の条件でPCRを行った。
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:Tm値    62 °C<br>
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:<tr><td align=center>Template DNA</td><td align=right>1 µl</td></tr>
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12日のPCR産物が増幅しているか確かめるため、アガロース電気泳動を行った。
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:左から順に1レーン;マーカー(1 Kbp)、2・3レーン;DIAP2<br>
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:期待される場所にバンドが見られた。
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:松浪、横井川
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:API2-MALT1について以下のプライマーを用いて、以下の条件でPCRを行った。
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:F primer GCCGCTCGAGAACATAGTAGAAAACAGCAT<br>
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:Tm値    57.8 °C<br>
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:R primer GCCGGCTAGCTCATTTTTCAGAAATTCTGA<br>
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:Tm値    56.5 °C<br>
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:増幅サイズ  約3131 bp<br>
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:<table border=1 width="250px">
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:<tr><td width="150px" align=center>10 µM Primer F</td><td width="100px"  align=right>0.4 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>10 µM Primer R</td><td align=right>0.4 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>Template DNA</td><td align=right>1 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>10 x Ex Taq Buffer</td><td align=right>2 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>Takara Ex Taq</td><td align=right>0.1 µl</td></tr>
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:<tr><td width="100px" align=center>Pre-Denature</td><td width="100px"  align=center>94°C</td><td width="100px"  align=center>2min</td><td width="100px">&nbsp;</td></tr>
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:<tr><td align=center>Denature</td><td align=center>94°C</td><td align=center>30sec</td><td align=center rowspan=3>37 Cycle</td></tr>
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:<tr><td align=center>Anneling</td><td align=center>51.5°C</td><td align=center>30sec</td></tr>
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:<tr><td align=center>Extension</td><td align=center>72°C</td><td align=center>3min20sec</td></tr>
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:<tr><td align=center>+Extension</td><td align=center>72°C</td><td align=center>10min</td><td width="100px">&nbsp;</td></tr>
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:<tr><td align=center>End</td><td align=center>4°C</td><td align=center>keep</td><td width="100px">&nbsp;</td></tr>
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PCR産物が増幅していることを確認するため、アガロース電気泳動を行った。
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:泳動後の写真<br>
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マーカー(1 Kbp)のみバンドが見られた。
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Revision as of 19:27, 4 October 2011



Home Team Project Parts Notebook Safety Human Practice Attributions


Home > Notebook > Lab Note > August Language:English/Japanese

9月1日

Member

武田


DIAP2について、以下の条件でPCRを行った。
PCR条件
10 µM Primer F1.5 µl
10 µM Primer R1.5 µl
Template DNA1 µl
10 x PCR Buffer5 µl
dNTPs5 µl
MgSO42 µl or 4 µl
ddH2O33 µl or 31 µl
KOD+ polymelase1 µl
 total 50 µl
Cycle条件
Pre-Denature94°C2min 
Denature94°C15sec35 Cyle
Anneling50.5°C30sec
Extension68°C100sec
End4°Ckeep 
PCR産物が増幅していることを確認するため、アガロース電気泳動を行った。


Results

泳動後の写真


正しい位置にバンドが見られた。


9月5日

Member

横井川


1日に確認したDIAP2をフェノールクロロホルム処理し、下表に従って制限酵素処理を行った。(37°C、overnight)
DIAP2
PCR産物 in ddH2O44 μl
10 x H Buffer5 μl
Xho1 μl
 total 50 μl
37°Cで20時間静置した


9月6日

Member

横井川


1日に確認したDIAP2をフェノールクロロホルム処理し、下表に従って制限酵素処理を行った。(37°C、overnight)
DIAP2
PCR産物 in ddH2O44 μl
10 x M Buffer5 μl
Xba1 μl
 total 50 μl
37°Cで20時間静置した。


9月7日

Member

横井川


[http://www.qiagen.com/products/dnacleanup/gelpcrsicleanupsystems/qiaquickgelextractionkit.aspx QIAquick Gel Extraction Kit]を使用してゲルからDIAP2のDNAを抽出した。


Results

バンドが確認できなかったためゲル抽出を行う事が出来なかった。


9月12日

Member

松浪、横井川


DIAP2について以下のプライマーを用いて、以下の条件でPCRを行った。
F primer GCTTCTCGATTGACGGAGCTGGGCATGGAGCT
Tm値    62 °C
R primer GCCGTCTAGATCACGAAAGGAACGTGCGCA
Tm値    66.4°C
増幅サイズ  約1514 bp


PCR条件
10 µM Primer F1.5 µl
10 µM Primer R1.5 µl
Template DNA1 µl
10 x PCR Buffer5 µl
dNTPs5 µl
MgSO42 µl
ddH2O33 µl
KOD+ polymelase1 µl
 total 50 µl
Cycle条件
Pre-Denature94°C2min 
Denature94°C15sec35 Cycle
Anneling50.5°C30sec
Extension68°C1min40sec
End4°Ckeep 


9月13日

Member

松浪、横井川


12日のPCR産物が増幅しているか確かめるため、アガロース電気泳動を行った。
Results

泳動後の写真


左から順に1レーン;マーカー(1 Kbp)、2・3レーン;DIAP2
期待される場所にバンドが見られた。


9月14日

Member

松浪、横井川


API2-MALT1について以下のプライマーを用いて、以下の条件でPCRを行った。
F primer GCCGCTCGAGAACATAGTAGAAAACAGCAT
Tm値    57.8 °C
R primer GCCGGCTAGCTCATTTTTCAGAAATTCTGA
Tm値    56.5 °C
増幅サイズ  約3131 bp


PCR条件
10 µM Primer F0.4 µl
10 µM Primer R0.4 µl
Template DNA1 µl
10 x Ex Taq Buffer2 µl
Takara Ex Taq0.1 µl
2.0 mM dNTPs2 µl
ddH2O14.1 µl
 total 20 µl
Cycle条件
Pre-Denature94°C2min 
Denature94°C30sec37 Cycle
Anneling51.5°C30sec
Extension72°C3min20sec
+Extension72°C10min 
End4°Ckeep 

PCR産物が増幅していることを確認するため、アガロース電気泳動を行った。
Results

泳動後の写真


マーカー(1 Kbp)のみバンドが見られた。