Team:KIT-Kyoto/Notebook/LabNoteJ/DIAP2-MALTJ9
From 2011.igem.org
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+ | PCR産物が増幅していることを確認するため、アガロース電気泳動を行った。 | ||
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Revision as of 19:27, 4 October 2011
Home | Team | Project | Parts | Notebook | Safety | Human Practice | Attributions |
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Home > Notebook > Lab Note > August | Language:English/Japanese |
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9月1日
Member
- 武田
- DIAP2について、以下の条件でPCRを行った。
PCR条件 10 µM Primer F 1.5 µl 10 µM Primer R 1.5 µl Template DNA 1 µl 10 x PCR Buffer 5 µl dNTPs 5 µl MgSO4 2 µl or 4 µl ddH2O 33 µl or 31 µl KOD+ polymelase 1 µl total 50 µl Cycle条件 Pre-Denature 94°C 2min Denature 94°C 15sec 35 Cyle Anneling 50.5°C 30sec Extension 68°C 100sec End 4°C keep
- PCR産物が増幅していることを確認するため、アガロース電気泳動を行った。
Results
- 泳動後の写真
- 正しい位置にバンドが見られた。
9月5日
Member
- 横井川
- 1日に確認したDIAP2をフェノールクロロホルム処理し、下表に従って制限酵素処理を行った。(37°C、overnight)
DIAP2 PCR産物 in ddH2O 44 μl 10 x H Buffer 5 μl XhoⅠ 1 μl total 50 μl
- 37°Cで20時間静置した
9月6日
Member
- 横井川
- 1日に確認したDIAP2をフェノールクロロホルム処理し、下表に従って制限酵素処理を行った。(37°C、overnight)
DIAP2 PCR産物 in ddH2O 44 μl 10 x M Buffer 5 μl XbaⅠ 1 μl total 50 μl
- 37°Cで20時間静置した。
9月7日
Member
- 横井川
- [http://www.qiagen.com/products/dnacleanup/gelpcrsicleanupsystems/qiaquickgelextractionkit.aspx QIAquick Gel Extraction Kit]を使用してゲルからDIAP2のDNAを抽出した。
Results
- バンドが確認できなかったためゲル抽出を行う事が出来なかった。
9月12日
Member
- 松浪、横井川
- DIAP2について以下のプライマーを用いて、以下の条件でPCRを行った。
- F primer GCTTCTCGATTGACGGAGCTGGGCATGGAGCT
- Tm値 62 °C
- R primer GCCGTCTAGATCACGAAAGGAACGTGCGCA
- Tm値 66.4°C
- 増幅サイズ 約1514 bp
PCR条件 10 µM Primer F 1.5 µl 10 µM Primer R 1.5 µl Template DNA 1 µl 10 x PCR Buffer 5 µl dNTPs 5 µl MgSO4 2 µl ddH2O 33 µl KOD+ polymelase 1 µl total 50 µl Cycle条件 Pre-Denature 94°C 2min Denature 94°C 15sec 35 Cycle Anneling 50.5°C 30sec Extension 68°C 1min40sec End 4°C keep
9月13日
Member
- 松浪、横井川
12日のPCR産物が増幅しているか確かめるため、アガロース電気泳動を行った。
Results
- 泳動後の写真
- 左から順に1レーン;マーカー(1 Kbp)、2・3レーン;DIAP2
- 期待される場所にバンドが見られた。
9月14日
Member
- 松浪、横井川
- API2-MALT1について以下のプライマーを用いて、以下の条件でPCRを行った。
- F primer GCCGCTCGAGAACATAGTAGAAAACAGCAT
- Tm値 57.8 °C
- R primer GCCGGCTAGCTCATTTTTCAGAAATTCTGA
- Tm値 56.5 °C
- 増幅サイズ 約3131 bp
PCR条件 10 µM Primer F 0.4 µl 10 µM Primer R 0.4 µl Template DNA 1 µl 10 x Ex Taq Buffer 2 µl Takara Ex Taq 0.1 µl 2.0 mM dNTPs 2 µl ddH2O 14.1 µl total 20 µl Cycle条件 Pre-Denature 94°C 2min Denature 94°C 30sec 37 Cycle Anneling 51.5°C 30sec Extension 72°C 3min20sec +Extension 72°C 10min End 4°C keep
PCR産物が増幅していることを確認するため、アガロース電気泳動を行った。
Results
- 泳動後の写真
マーカー(1 Kbp)のみバンドが見られた。