Team:KIT-Kyoto/Notebook/LabNote/GFPMLF8J

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フェノールクロロホルム処理をした後、下表に従って、30分37℃で制限酵素処理を行った。
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:<table border=1 width="220px">
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:<tr><td width="130px" align=center>ddH<sub>2</sub>O</td><td width="90px"  align=right>2 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>BBa_E0240</td><td align=right>50 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center><em>Eco</em>RⅠ</td><td align=right>1 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center><em>Pst</em>Ⅰ</td><td align=right>1 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>10 x H Buffer</td><td align=right>6 µl</td></tr>
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:<tr><td align=center>&nbsp;</td><td align=right>total 60 µl</td></tr>
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制限酵素処理後、100 V 30minで電気泳動を行った。
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<b>Results</b>
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:泳動後の写真<BR>
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Revision as of 15:05, 3 October 2011



Home Team Project Parts Notebook Safety Human Practice Attributions


Home > Notebook > Lab Note > August Language:English/Japanese

8月22日

Member

吉村、中川、松浪


Purpose

BBa_E0240のトランスフォーメーション


Results

コロニーの生育がみられた。


8月23日

Member

吉村、中川


Purpose

1.BBa_E0240のプレカルチャー
2.BBa_E0240からATG GFPを作るためのプライマー設計


Results

1.全てのサンプルに大腸菌の増殖がみられた。
2.以下のように設計した。
F: 3' TTGAATTCTTTCTAGATTCGTAAAGGAGAAGAA

     EcoRⅠ    Xba

Tm値:67.75°C  33塩基


R: 5' AAACTGCAGAAAACTAGTTTTTTATTATTTGTATAG

      PstⅠ     Spe

Tm値:67.66°C  36塩基

8月24日

Member

吉村、中川


Purpose

BBa_E0240のアルカリミニプレップ
BBa_E0240のアガロース電気泳動


Method

BBa_E0240のアルカリミニプレップをした後、下表に従って、30分37℃で制限酵素処理を行った。
ddH2O2 µl
BBa_E024050 µl
EcoRⅠ1 µl
Pst1 µl
10 x H Buffer6 µl
 total 60 µl


制限酵素処理後、100 V 30minでアガロース電気泳動行った。


Results

泳動後の写真


800bpあたりにバンドが出ていた。


8月25日

Member

吉村、中川


Purpose

PCR(23日に作製したプライマーを用いた)
アガロース電気泳動(PCR産物の増幅確認)


Method

以下の条件でPCRを行った。
PCR条件
10 µM GFP Primer F1.5 µl
10 µM GFP Primer R1.5 µl
BBa_E02401 µl
10 x PCR Buffer for KOD Plus5 µl
dNTPs4 µl
MgSO44 µl
ddH2O32 µl
KOD Plus1 µl
 total 50 µl
Cycle条件
Pre-Denature95°C30sec 
Denature95°C30sec30 Cycle
Anneling50°C1min
Extension68°C1kb/min
End4°Ckeep 
PCR産物が増幅していることを確認するため、アガロース電気泳動を行った。
PCR産物の増幅を確認した後、下表に従ってPCR産物の制限酵素処理を行った。(37°C、overnight)
ddH2O2 µl
BBa_E024050 µl
EcoRⅠ1 µl
Pst1 µl
10 x H Buffer6 µl
 total 60 µl


Results

泳動後の写真


800bpあたりにバンドが見られ、PCR産物の増幅が確認できた。


8月26日

Member

中川


Purpose

1.ゲルからのDNA抽出
2.pSB1C3のトランスフォーメーション


Results

1.ゲル切り出し後の写真


濃度は510 ng/µlだった。


2.小さいが、コロニーが生えていた。念のために、翌日再度トランスフォーメーションをする。


8月27日

Member

吉村


Purpose

pSB1C3のトランスフォーメーション


Results

小さいコロニーの生育がみられた。


8月29日

Member

吉村、中川


Purpose

pSB1C3のプレカルチャー(6サンプル)


Results

6サンプルのうち3サンプルは培養に成功した。
3サンプルはコンタミの可能性があるため、念を入れて翌日もプレカルチャーを行うことにした。


8月30日

Member

中川


Purpose

1.pSB1C3のプレカルチャー(6サンプル)
プライマーの再設計


Results

1.コンタミすることなく培養に成功した。
2.以下のように設計した。
F: 3' TTGAATTCTTTTCTAGATTTCGTAAAGGAGAAGAA

     EcoRⅠ     Xba

Tm値:68.8゜C  35塩基


8月30日

Member

中川


Purpose

pSB1C3のアルカリミニプレップ
pSB1C3のアガロース電気泳動


Method
フェノールクロロホルム処理をした後、下表に従って、30分37℃で制限酵素処理を行った。

ddH2O2 µl
BBa_E024050 µl
EcoRⅠ1 µl
Pst1 µl
10 x H Buffer6 µl
 total 60 µl


制限酵素処理後、100 V 30minで電気泳動を行った。
Results

泳動後の写真


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