Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/ProtocolsFr

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Latest revision as of 23:24, 21 September 2011

Conditions générales de culture

Les antibiotiques ont été utilisés aux concentrations suivantes :
Ampiciline (Amp) : 100µg/mL
Chloramphenicol (Cm) : 20µg/mL
Spectinomycine (Spc) : 100µg/mL
Kanamycine (Kan) : 30µg/mL
Pour le chloramphenicol, le solvant est un mélange 70/30 (v/v) eau/éthanol ; les autres antibiotiques ont été dissouts dans l'eau. Tous les volumes sont calculés pour une solution mère 10X.

La composition des différents milieux que nous avons utilisés est la suivante :
LB : 10 g de tryptone, 5 g d'extarit de levure et 10g de NaCl pour 1L de LB liquide. Le LB solide pour les boîtes est réalisé par addition d'agar pour atteindre une concentration de 1.5%.
M63G : 100/1/1 (v/v/v) de M63, glucose 20% et LB.
LB/2 : un mélange 50/50 (v/v) de LB et eau.

Choisissez l'un de nos protocoles pour lire sa description

. Quantification de biofilms

. Transformation chimique au CaCl2

. Digestion Fermentas

. Ligation

. Kit de miniprepMacherey-Nagel

. Digestion Ozyme

. Coulage de boîtes

. Kit de midiprep QIAGen

. Kit de miniprep QIAGen

. Mise en collection de souches

. Transformation chimique au TSS

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+              Conditions générales de culture<br><HR>
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+<p style=" line-height : 1.5em">
+Les antibiotiques ont été utilisés aux concentrations suivantes : <br>
+Ampiciline (Amp) : 100µg/mL <br>
+Chloramphenicol (Cm) : 20µg/mL <br>
+Spectinomycine (Spc) : 100µg/mL <br>
+Kanamycine (Kan) : 30µg/mL<br>
+Pour le chloramphenicol, le solvant est un mélange 70/30 (v/v) eau/éthanol ; les autres antibiotiques ont été dissouts dans l'eau. Tous les volumes sont calculés pour une solution mère 10X. <br/> <br/>
+La composition des différents milieux que nous avons utilisés est la suivante :<br/>
+LB : 10 g de tryptone, 5 g d'extarit de levure et 10g de NaCl pour 1L de LB liquide. Le LB solide pour les boîtes est réalisé par addition d'agar pour atteindre une concentration de 1.5%. <br/>
+M63G : 100/1/1 (v/v/v) de M63, glucose 20% et LB. <br/>
+LB/2 : un mélange 50/50 (v/v) de LB et eau. <br/>
+</p>
+    <br>
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+</div>
 <div class="contenugrand2";>
      <br/> <br/>
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          <p> <font color="green" size="5">
-Choose one of our protocols to read its description
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-       </font></p>
+          </font></p>
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-<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/BiofilmQuant"> Biofilm quantification </a>
+<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/BiofilmQuantFr"> Quantification de biofilms <img src="https://static.igem.org/mediawiki/2011/6/64/Fileicon-pdf.png" style="width:25px";/></a>
    </p>
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     <p> .
-<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/CaCl2_trans"> CaCl2 chemical transformation </a>
+<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/CaCl2_transFr"> Transformation chimique au CaCl2 <img src="https://static.igem.org/mediawiki/2011/6/64/Fileicon-pdf.png" style="width:25px";/></a>
    </p>
      <br/> <br/>
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     <p> .
-<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/Fermentas"> Fermentas digestion </a>
+<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/FermentasFr">Digestion Fermentas <img src="https://static.igem.org/mediawiki/2011/6/64/Fileicon-pdf.png" style="width:25px";/></a>
    </p>
      <br/> <br/>
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-<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/Ligation"> Ligation </a>
+<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/LigationFr"> Ligation <img src="https://static.igem.org/mediawiki/2011/6/64/Fileicon-pdf.png" style="width:25px";/></a>
     </p>
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-<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/Isolation"> NucleoSpin Plasmid QuickPure : Isolation of high-copy plasmid DNA from E. coli </a>
+<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/IsolationFr"> Kit de miniprepMacherey-Nagel <img src="https://static.igem.org/mediawiki/2011/6/64/Fileicon-pdf.png" style="width:25px";/></a>
     </p>
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 <p> .
-<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/Ozyme"> Ozyme digestion</a>
+<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/OzymeFr"> Digestion Ozyme<img src="https://static.igem.org/mediawiki/2011/6/64/Fileicon-pdf.png" style="width:25px";/></a>
     </p>
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      <br/> <br/>
-    <p> .
-<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/DNA-purification"> Plasmid or Cosmid DNA purification using HiSpeed Plasmid Midi kits </a>
+<p> .
+<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/PouringFr"> Coulage de boîtes<img src="https://static.igem.org/mediawiki/2011/6/64/Fileicon-pdf.png" style="width:25px";/></a>
+    </p>
+    <br/> <br/>
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+ <p> .
+<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/DNA-purificationFr"> Kit de midiprep QIAGen <img src="https://static.igem.org/mediawiki/2011/6/64/Fileicon-pdf.png" style="width:25px";/></a>
     </p>
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     <p> .
-<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/Miniprep"> Plasmid DNA purification using QIAprep® Spin Miniprep Kit</a>
+<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/MiniprepFr"> Kit de miniprep QIAGen<img src="https://static.igem.org/mediawiki/2011/6/64/Fileicon-pdf.png" style="width:25px";/></a>
     </p>
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      <br/> <br/>
+<p> .
+<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/StorageFr"> Mise en collection de souches<img src="https://static.igem.org/mediawiki/2011/6/64/Fileicon-pdf.png" style="width:25px";/></a>
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-<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/TSS_trans"> TSS chemical transformation </a>
+<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/TSS_transFr"> Transformation chimique au TSS <img src="https://static.igem.org/mediawiki/2011/6/64/Fileicon-pdf.png" style="width:25px";/></a>
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