Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/ProtocolsFr

From 2011.igem.org

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<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/FermentasFr"> Digestion Fermentas </a>  
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<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/IsolationFr"> NucleoSpin Plasmid QuickPure : Isolation d'ADN plasmidien à haut nombre de copies depuis E.Coli </a>
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<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/IsolationFr"> Kit de miniprepMacherey-Nagel </a>
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<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/DNA-purificationFr"> Purification d'ADN plasmidien utilisant les kits HiSpeed plasmid midi</a>  
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<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/PouringFr"> Coulage de boîtes</a>
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<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/MiniprepFr"> Purification d'ADN plasmidien utilisant  le kit de miniprep QIAprep® Spin</a>
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<a href="/Team:Lyon-INSA-ENS/Realisation/Protocols/MiniprepFr"> Kit de miniprep QIAGen</a>
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Revision as of 10:08, 13 September 2011






Conditions générales de culture






Les antibiotiques ont été utilisés aux concentrations suivantes :
Ampiciline (Amp) : 100µg/mL
Chloramphenicol (Cm) : 20µg/mL
Spectinomycine (Spc) : 100µg/mL
Kanamycine (Kan) : 30µg/mL
Pour le chloramphenicol, le solvant est un mélange 70/30 (v/v) eau/éthanol ; les autres antibiotiques ont été dissouts dans l'eau. Tous les volumes sont calculés pour une solution mère 10X.

La composition des différents milieux que nous avons utilisés est la suivante :
LB : 10 g de tryptone, 5 g d'extarit de levure et 10g de NaCl pour 1L de LB liquide. Le LB solide pour les boîtes est réalisé par addition d'agar pour atteindre une concentration de 1.5%.
M63G : 100/1/1 (v/v/v) de M63, glucose 20% et LB.
LB/2 : un mélange 50/50 (v/v) de LB et eau.







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